树突状细胞(dendritic cell,DC)被认为是当前发现的功能最强的抗原递呈细胞(APC)。一个DC能够激活的T细胞数量在100到3000个之间,这一数字相比于巨噬细胞和B细胞要高出100到1000倍。DC通过处理肿瘤抗原并将其呈递给T细胞,能够显著刺激初始T细胞的增殖。然而,其他类型的APC,如巨噬细胞和B细胞,仅能激活已经活化或记忆的T细胞。
目前,DC的体外培养主要依赖细胞因子从骨髓、外周血和脐带血的DC前体进行定向诱导。由于骨髓和脐带血的取样难度较高,外周血因其采集简单且无需复杂筛选和纯化,成为临床获取DC的优选途径。
在细胞因子的诱导过程中,使用GM-CSF和IL-4促进单核细胞向“巨噬样细胞”的分化。IL-4能够抑制DC前体向CD14+巨噬细胞的分化,而将其导向CD14-/CD1a-的未成熟树突状细胞(iDC)。此时,iDC具有较强的抗原摄取与加工能力,但递呈能力较弱,细胞表面中等水平表达MHCⅠ和MHCⅡ类分子及B7家族分子(如CD80、CD86),但CD14则表现为低表达或不表达。
随后,TNF-α和IL-1β的联合作用则激活NF-κB信号通路,促进DC的成熟(标记为CD1a+/CD83+)。此外,IL-6和PGE2能够提升DC的产量、成熟度、迁移能力和免疫激活能力。在这一阶段,成熟DC(mDC)具备更强的抗原递呈能力,能够有效激活T细胞。
在细胞培养过程中,采用Ficoll梯度离心法从全血中分离出人外周血单个核细胞(PBMC)。然后通过贴壁法或磁珠法富集CD14+单核细胞。贴壁法涉及将PBMC在37℃下培养以促进单核细胞附壁,而磁珠法则通过CD14+磁珠阳性分选来获得高纯度单核细胞。
在接下来的培养阶段,预计于第3天进行半量换液,并通过离心收集上清液,随后加入含GM-CSF和IL-4的新鲜培养基继续培养。到第5天,需轻轻吹打培养基收获悬浮细胞及松散贴壁细胞,并进行离心以收集未成熟的MoDC。最终,在第8天,成熟的DC细胞会表现出显著的细胞体积增大和大量的细刺状突起。
常用的流式细胞检测方法用于分析DC的成熟状态及其功能特征,包括CD14、HLA-DR、CD1a/CD83、CD40/CD80/CD86及DC-SIGN等分子。此外,人DC通常还会评估IL-12p70、IL-10和IL-1β等细胞因子,这些细胞因子能够更全面地反映DC的免疫调节功能。
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